生态修复对水体微生物的作用

生态修复对水体微生物的作用

 

原位生态修复技术是利用沉水植物在养殖塘中的控藻增氧效应,对养殖塘中氮、磷等营养物质的吸收同化作用,并应用鱼、草、蟹、虾、贝等构建水域生态系统,完善食物链网,同时提供天然饲料和水生动物栖息地,改善养殖塘环境;结合异位生态处理塘、养殖工艺特点进一步削减养殖污水排放,同时从水产养殖健康生态系统角度分析,发挥水域生态系统功能,形成生态化健康养殖模式[1-2]。而浮游细菌是水生态系统的分解者和小型滤食性动物的饵料,在湖泊生态系统的物质循环和能量流动中具有重要的作用,水质的优劣、水体生态状况的改变都会对细菌群落的组成产生影响[3]。此外,水产养殖系统内细菌在物质循环、病害发生与否及水产养殖对象的生长、营养和免疫方面都产生重要作用,与水产养殖系统有关的微生物群落结构研究也有报道,但对于系统微生物状况的持续变化以及养殖菌剂对微生物系统影响的报道不多[4-7]。随着分子生物学方法的发展,以基因检测为基础的微生物检测方法在群落结构的动态监测中具有快速、便捷的优点,变性梯度凝胶电泳(DGGE)是目前应用较为广泛的微生物群落结构分子生物学检验方法之一。笔者除了采用传统法研究微生物数量变化之外,还采用DGGE技术对在养殖区内微生物群落结构的变化开展了较深入的研究,旨在为陆域养殖系统的生物修复提供理论基础。   1材料与方法   1.1材料   实验基地位于江苏无锡市郊胡埭镇龙延村直湖港岸边。由于水产养殖主要收获季节在6—10月,于2009年和2010年的6月、8月、10月3个月在无锡直湖港陆域水产养殖区内采集水样,养殖区包括进水口、蟹塘1号、蟹塘2号、蟹苗塘、鱼塘1号、鱼塘2号、鱼苗塘及甲鱼塘8个点(图1)。   1.2方法   1.2.1环境细菌的检测和样品总DNA的提取   采用平板培养法测定异养细菌数量,用0.2m的聚碳酸酯膜过滤200mL水样富集水中的细菌,采用申能博采的“环境样品DNA提取试剂盒”进行水样细菌总DNA的提取,具体操作方法参见说明书。   1.2.2PCR-DGGE扩增   根据参考文献[10],采用上海英骏公司合成的引物序列P338fGC:5’-CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3’和518r:5’-ATTACCGCGGCTGCTGG-3’,用于扩增细菌16SrDNA的V3区段,片段长度为236bp。扩增总体系为50μL:模板DNA40~80ng;10mmol/L4×dNTPs1.5μL,5U/μLTaq酶1μL,20pmol/μL引物各1.5μL,10×扩增缓冲液(含Mg2+)5μL,ddH2O补足至50μL。PCR扩增条件:94℃预变性5min;94℃1min,55℃退火30s,72℃3min,35个循环;72℃延伸10min。反应产物直接用于变性梯度凝胶电泳(DGGE)分析。   1.2.3PCR-DGGE凝胶电泳及结果处理   DGGE凝胶电泳∶所用胶浓度为8%(丙烯酰胺∶双丙烯酰胺=37.5∶1,体积比),细菌page胶变性梯度55%~70%,真核生物变性梯度30%~50%,用1×TAE作为电泳缓冲液。每孔上样量50μL。在60℃,150V电泳300min后溴化乙锭染色,紫外凝胶成像观察。通过QuantityOne软件将DGGE图谱照片转化成数字信号,运用MSVP软件对DGGE指纹图谱的多样性和相似性数据进行计算,用SPSS软件进行主成份分析(PCA分析)。多样性和相似性的计算方法分别采用香侬威纳(Shannon-Wie-ner)多样性指数和索伦森相似性系数(Sorensen’sCoefficient)表示。   2结果与分析   2.1细菌数量变化   从异样细菌变化情况(图2)可知,养殖区内的异样细菌数量变化波动较大,特别是2个鱼塘的细菌数量波动可达10倍以上。从图3也可看出,采用综合治理技术的蟹塘1号及蟹塘2号的微生物数量明显下降,分别从2009年的6500个/mL及11000个/mL下降到2010年的1500个/mL和2000个/mL,水质净化效果明显,证明综合治理技术确有效果。在其他养殖塘内,鱼塘的细菌数量一直较高,最高17000个/mL,两年的平均值也都在10000个/mL上下波动,这可能与养殖密度较高有关,相对鱼苗塘和甲鱼塘细菌数量变化较小,平均值都在5000个/mL左右。统计数据亦表明,2010年的微生物数量总体低于2009年同期,这可能与养殖方式的改进以及太湖整体水质变好有关。   2.2水样细菌的16SrDNA多态性   采用DGGE分析PCR产物,均得到若干分离的条带(图4)。每个月的电泳图谱条带一直在变化,而且每个图谱中共有条带并不多见,因此,在不同的养殖系统内,微生物的变化非常明显,很难找到共有的微生物的存在。尽管8个养殖池水是相通的,但每个池内的小生态系统对微生物的影响较大,导致这一变化的出现。   2.3细菌的Shannon-Wiener多样性指数   由图5可见,8个样点的香农威纳指数都在2.0以上,多样性较好,进水、蟹塘以及鱼塘2号的多样性指数变化稍大,可能与生态系统不太稳定有关,而鱼苗塘、甲鱼塘的多样性指数较为稳定,联系微生物数量来看,这2个塘的生态系统较为稳定,可能与两塘受到的外界干扰较少有关。从图6可见,2010年的微生物多样性普遍高于2009年,这也表明,2010年微生态系统情况好于2009年,也从另一个方面说明水质有变好的趋势。#p#分页标题#e#   2.4相似性分析   由图7可见,太湖水进入到养殖区后,水体中的微生物结构发生了明显变化,2009年与2010年进水和养殖区的微生物相似性最低,其中,2009年进水的相似性仅为20%。而从具体的养殖区域分析,微生物的相似性受年份的影响比受到养殖系统的影响更大,同一年的样品相似性比同一个养殖区不同年份的样品相似性更高。说明,在一个系统中,环境因子对微生物的影响可能比生态因子对微生物群落结构的影响更大。   3小结   通过对2009年和2010年收获季节的养殖水体微生物的比较可明显看出,采用原位生态修复和异位湿地处理集成的生态修复技术处理后,异样细菌的数量明显下降,养蟹池塘从原来的微生物中污染状态转为轻污染状态,系统中微生物的多样性也有明显上升,因此,整个生态修复措施对于维持养殖区的生态化运行具有良好的意义。此外,2010年的系统微生物状况要普遍好于2009年,也与生态化养殖的改进有一定关系。从微生物的相似性分析上看,每个不同的养殖区域有各自的微生物系统,而且每年的微生物种类和数量变化很大,很少出现水质净化万能菌种。因此,改善养殖环境的水质条件,形成良好的养殖生态系统,由此加强对土著微生物的培育,,对水质的净化具有重要意义。